HE染色细胞核灰蓝原因：（1）组织处理温度过高、过热，在石蜡停留的时间过长；（2）固定时间太短，接下来就直接在高浓度的乙醇中行脱水处理。对策：理论上来说，加热处理*在组织浸蜡步骤才使用，组织不能在热的蜡液中停留过长时间。如果由于某些原因不能进行下步包埋处理，完成浸蜡处理后的组织，可将组织连同塑料包埋盒一并放置在室温空气中，冷却凝固，以备包埋。待需要包埋时再重新加温直至石蜡融化即可。组织在处理前必须确保固定良好，脱水比较好能从低浓度的乙醇开始。HE染色是病理实验中比较用的一种基础染色方法。广东结果客观的HE染色分析

HE染色主要是为通细胞及胞核形态、大小来区别各种细胞的,并不是直接通过颜色来区分的苏木精染液为碱性,主要使细胞核内的染色质与胞质内的核糖体着紫蓝色；伊红为酸性染料,主要使细胞质和细胞外基质中的成分着红色.炎性细胞一类人体内的免疫细胞,包括中性粒细胞、嗜酸粒细胞、单核巨噬细胞、淋巴细胞和浆细胞.淋巴细胞是**容易和其它几种细胞区分的,细胞小而圆,核浆比很大,核浓染成深蓝紫色.浆细胞大小介于淋巴细胞和巨噬/多核/巨细胞之间,胞浆略嗜碱,核偏位,核染色深,高倍镜下可见核呈车轮状.多核细胞和巨细胞的概念是不是有点重叠,多核细胞故名思意是有多个核的大型细胞,如朗汉氏巨细胞,常在肺结核的干酪样坏死灶周围出现,多个核排成一圈,异物巨细胞也是有许多个核的体积巨大的细胞,这两种巨细胞胞质都偏酸.巨噬细胞似乎在不同的组织中有不同的名称.吉林病理HE染色HE染色取材、染色以及分析方法介绍。

HE染色实验步骤：（1）样品制备：对于贴壁生长细胞，胰酶消化，调整细胞浓度约1×105/ml，滴加于盖玻片上(置于6孔板中)，培养相应时间后，取出细胞爬片，用PBS洗涤3次。（2）样品固定：95%乙醇固定20min，PBS洗涤2次，每次1min。（3）染核：苏木素染液染色2-3min，自来水洗涤。（4）分色：镜下观察，若细胞核染色过深，用1%盐酸酒精溶液分色数秒，自来水洗涤。（5）染胞质：浸入伊红染液染色1min，自来水洗涤。（6）吹干或自然晾干细胞爬片后，中性树胶封片。若细胞用4%多聚甲醛固定，则染色时间相应延长，苏木素染色12-15min，伊红5min即可

HE染色常见问题：切片染色不均匀，有片状的弱着**存在答：（1）取材时组织太厚，固定过久，导致深部组织固定不佳，而表浅组织过度固定，而透明、脱水、浸蜡均是如此，这样在后期染色时就会出现染色不均匀。应该将厚的组织剖开固定。（2）制片过程有问题，切片厚薄不一，或者有刀痕，或组织与玻片间存在气泡。同一张切片厚薄不一，一般都是在制片时，刀片固定不佳或刀片钝或刀片与组织角度不佳（一般比较好角度为5°）（3）脱蜡前未烘烤，脱蜡时间过短或脱蜡液使用过久，导致脱蜡不彻底。（4）染色液过少，着色不均匀；或染色时部分组织干涸而另一部分湿润，这样会导致组织吸附染料的能力不一。（5）分化不当。南京英瀚斯，专业的病理染色实验服务平台。专业的HE染色服务平台，南京英瀚斯生物。

HE染色伊红着色淡分析及应对原因：（1）伊红染液的pH值可能大于5；（2）蓝化液残留过多；（3）切片太薄；（4）切片经伊红染色后在乙醇脱水时间过长。对策：检查伊红染液的pH值，如果必要的话，用乙酸将其调节在4～5之间，从而使伊红染色彩艳丽。确保每次蓝化步骤完成后，使用的弱碱性溶液被充分洗去，玻片上没有残留的弱碱性溶液。检查切片的厚度。脱水时不要让切片在低浓度乙醇停留时间过长，因为含水多的低浓度乙醇会将伊红的颜色分化掉。关于HE染色，你不知道的实验技巧。四川推荐的HE染色分析

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HE染色知识点1：对送检组织标本的要求送检组织标本在手术切除或活检后应当立即放入4%中性缓冲甲醛溶液中固定。尸检标本应当尽量在死亡后尽早取材固定。送检组织需要全部取材的，应当在送检单上注明，有特殊要求（如细菌培养、解释道化学分析等）应当事先联系，并且在标本未固定前进行处理。知识点2：组织取材要求在对送检组织标本进行详细检查的基础上，根据诊断的需要，确定取材的部位和块数。切取的组织应当按照不同的部位分别给予不同的编号或标记，以便镜检时核对。另外，尽可能在取材前对有意义的标本的表面及剖面镜下摄影，并编号存档南京英瀚斯，专业的病理染色实验服务平台。广东结果客观的HE染色分析