细胞冻存是细胞保存的主要方法之一。利用冻存技术将细胞置于-196℃液氮中低温保存，可以使细胞暂时脱离生长状态而将其细胞特性保存起来，这样在需要的时候再复苏细胞用于实验。而且适度地保存一定量的细胞，可以防止因正在培养的细胞被污染或其他意外事件而使细胞丢种，起到了细胞保种的作用。除此之外，还可以利用细胞冻存的形式来购买、寄赠、交换和运送某些细胞。细胞冻存时向培养基中加入保护剂--终浓度5%．15%的甘油或二甲基亚砜(DMSO)，可使溶液冰点降低，加之在缓慢冻结条件下，细胞内水分透出，减少了冰晶形成，从而避免细胞损伤。采用"慢冻快融"的方法能较好地保证细胞存活。标准冷冻速度开始为-1到-2℃/min，当温度低于-25℃时可加速，到-80℃之后可直接投入液氮内(-196℃)。无血清快速细胞冻存液加入适量的细胞冻存液于离心管中，调节细胞浓度至1~5×106 /ml;即用型细胞冻存液使用方法

细胞冻存和复苏的原则是：慢冻速融，这样更加有利于保持细胞的活力。冻存细胞不加任何保护剂，会导致细胞内冰晶的产生，从而使细胞产生内源性的机械损伤，引起细胞内环境渗透压，PH，电解质等的改变，进而促使细胞死亡。在过去的几十年中，科研工作者将培养基、血清和DMSO按照一定的比例配制成冻存液，并配合手工使细胞从4℃，-20℃，-80℃到液氮中逐步转移使其达到“慢冻”的效果。但这种自制的冻存液储存时间一般比较短，不能满足时间跨度大的实验项目的需求。且这样人力和时间成本大，人手操作的误差和血清制品的批间差也给实验结果带来了不稳定性。低温细胞冻存液怎么样细胞冻存液比例是多少?

细胞复苏佩戴眼镜和手套，从液氮中取出冻存的细胞管。迅速放入38℃水浴中，并不时摇动，在1分钟内使其完全融化，然后在无菌条件下取出细胞。1200rpm/min离心5-10min，弃去上清，加入适量培养液混匀后接种于培养瓶中，次日更换一次培养液。细胞冻存和复苏操作步骤：细胞冻存和复苏采取“慢冻快融”的原则，慢速冷冻可使细胞内的水份渗出细胞外，减少细胞内形成冰晶的机会，快融以保证细胞外结晶快速融化，避免慢速融化水份渗入细胞内，再次形成胞内冰晶造成对细胞的损伤。

3、步骤：（1）冷冻前24-48小时更换半量或全量培养基，使细胞处于指数生长期。（2）配制冷冻保存溶液(使用前配制)：另取一离心管，加入培养基、血清，逐滴加入二甲基亚砜（DMSO）至20%浓度，即制成双倍的冻存液，置于室温下待用。（3）离心收集培养之细胞，用加血清的培养基重悬起细胞，取少量细胞悬浮液(约0.1ml)计数细胞浓度及冻前存活率。（4）取与细胞悬液等量的冻存液，缓慢逐滴加入细胞悬液，并晃动试管，制成细胞冻存悬液（DMSO***浓度为5～10％），使细胞浓度为1～5×106cells/ml，混合均匀，分装于已标示完全之冷冻保存管中，1～2ml/vial，并取少量细胞悬浮液作污染检测。严密封口后，注明细胞名称、代数、日期。然后进行冻存。细胞冻存液可以放多久?

细胞冷冻的原理：细胞冻存及复苏的基本原则是慢冻快融，实验证明这样可以比较大限度的保存细胞活力。如今细胞冻存多采用甘油或二甲基亚砜作保护剂，这两种物质能提高细胞膜对水的通透性，加上缓慢冷冻可使细胞内的水分渗出细胞外，减少细胞内冰晶的形成，从而减少由于冰晶形成造成的细胞损伤。复苏细胞应采用快速融化的方法，这样可以保证细胞外结晶在很短的时间内即融化，避免由于缓慢融化使水分渗入细胞内形成胞内再结晶对细胞造成损伤。BI细胞冻存液是什么成分?即用型细胞冻存液使用方法

细胞冻存液配制主要成分.即用型细胞冻存液使用方法

无血清细胞冻存液介绍1.是一种通用型的细胞冻存液，可用于冻存人和各种动物细胞株；完全冻存液配方，即开即用，方便快捷；非程序降温，-80℃低温冰箱冻存长达5年；特别配方（主要成分为DMSO和氨基酸）具有有效提高细胞冻存活率和复苏活力；不含动物来源性蛋白，能减少各类***、霉菌和支原体等的污染，确保冻存细胞安全；可孔板（细胞培养板）冻存，可用于杂交瘤细胞的冻存液.拳头产品“无血清细胞冻存液”半价销售（注：本次价格调整有效期限至结束）无血清细胞冻存液对比含血清细胞冻存液的优势Cellregen无血清细胞冻存液存储条件储存于4℃或-20℃。质量保障期从产品的生产日期起，为期三年。3个月以上没有使用冻存液计划时，尽可能-20℃冷冻保存。为避免重复冻融过程可能导致的冻存液品质下降和性能降低，推荐将产品分装成小管后，再存放于-20℃冰箱冻存。即用型细胞冻存液使用方法

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