细胞冻存和复苏的原则是:慢冻速融,这样更加有利于保持细胞的活力。冻存细胞不加任何?;ぜ?,会导致细胞内冰晶的产生,从而使细胞产生内源性的机械损伤,引起细胞内环境渗透压,PH,电解质等的改变,进而促使细胞死亡。在过去的几十年中,科研工作者将培养基、血清和DMSO按照一定的比例配制成冻存液,并配合手工使细胞从4℃,-20℃,-80℃到液氮中逐步转移使其达到“慢冻”的效果。但这种自制的冻存液储存时间一般比较短,不能满足时间跨度大的实验项目的需求。且这样人力和时间成本大,人手操作的误差和血清制品的批间差也给实验结果带来了不稳定性。细胞冻存液需要现用现配?上海细胞冻存液一次加多少
用以下方法冻存细胞:4℃放置15-30分钟(一定不能省略该步骤,否则冻存液无法完全渗透过细胞膜进入细胞起?;ぷ饔茫倩核俳滴路椒ǎㄒ允褂眯枰毂嫉腘algene程序降温盒为例,冷冻细胞的过程中可以辅助实现缓慢降温,以达到近似于1℃/分钟):-80℃过夜→液氮长期保存。(不推荐在-80℃长期保存;异丙醇易挥发,并且容易吸收空气中的水分,建议使用5次后更换)②逐步降温法:-20℃保存2小时,然后-80℃中保存2小时,随后可以在-196℃液氮中长期保存。上海细胞冻存液一次加多少加入适量的细胞冻存液,重悬细胞,使细胞浓度达到1~10×106/ml,置于冻存管中密闭。
解冻解冻后,应该立即铺板在预先包被好的培养皿中。开始之前,提前准备好以下材料:试管,恢复至室温的培养基,预先包被的培养板,确保整个解冻复苏程序可以在**短的时间内完成。注意:不要在37°C水浴中加热培养基。1.在37°C水浴中快速解冻,持续温和的在水中晃动冻存管,直到剩余少量细胞还处于结冰状态。2.水浴中取出冻存管,用70%的酒精或异丙醇擦拭除菌。3.用2mL的血清移液管把细胞悬液转移到一个15mL的锥形试管。注意:用2mL的血清移液管代替1mL的***头可以减少细胞聚集体的分解。
3、步骤:(1)冷冻前24-48小时更换半量或全量培养基,使细胞处于指数生长期。(2)配制冷冻保存溶液(使用前配制):另取一离心管,加入培养基、血清,逐滴加入二甲基亚砜(DMSO)至20%浓度,即制成双倍的冻存液,置于室温下待用。(3)离心收集培养之细胞,用加血清的培养基重悬起细胞,取少量细胞悬浮液(约0.1ml)计数细胞浓度及冻前存活率。(4)取与细胞悬液等量的冻存液,缓慢逐滴加入细胞悬液,并晃动试管,制成细胞冻存悬液(DMSO***浓度为5~10%),使细胞浓度为1~5×106cells/ml,混合均匀,分装于已标示完全之冷冻保存管中,1~2ml/vial,并取少量细胞悬浮液作污染检测。严密封口后,注明细胞名称、代数、日期。然后进行冻存。复苏细胞应采用快速融化的方法,这样可以保证细胞外结晶在很短的时间内即融化.
如果将细胞暴露在这样高溶质的溶液中且时间过长,细胞膜上脂质分子会受到损坏,细胞便发生渗漏,在复温时,大量水分会因此进入细胞内,造成细胞死亡。这种因保存溶液中溶质浓度升高而导致的细胞损伤称为溶质损伤或称溶液损伤。当温度进一步下降,细胞内外都结冰,产生冰晶损伤。但是如果在溶液中加入冷冻?;ぜ?,则可?;は赴馐苋苤仕鹕撕捅鹕?。因为冷冻?;ぜ寥菀淄芤褐械乃肿咏岷?,从而降低冰点,减少冰晶的形成,并且通过其摩尔浓度降低未结冰溶液中电解质的浓度,使细胞免受溶质损伤,细胞得以在很低温条件下保存无血清快速细胞冻存液将加有冻存液的细胞混合液分装至冻存管中;建议没管1ml或1.5ml.上海无血清细胞冻存液使用方法
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