细胞冻存是细胞保存的主要方法之一。利用冻存技术将细胞置于-196℃液氮中低温保存，可以使细胞暂时脱离生长状态而将其细胞特性保存起来，这样在需要的时候再复苏细胞用于实验。而且适度地保存一定量的细胞，可以防止因正在培养的细胞被污染或其他意外事件而使细胞丢种，起到了细胞保种的作用。除此之外，还可以利用细胞冻存的形式来购买、寄赠、交换和运送某些细胞。细胞冻存时向培养基中加入保护剂--终浓度5%．15%的甘油或二甲基亚砜(DMSO)，可使溶液冰点降低，加之在缓慢冻结条件下，细胞内水分透出，减少了冰晶形成，从而避免细胞损伤。采用"慢冻快融"的方法能较好地保证细胞存活。标准冷冻速度开始为-1到-2℃/min，当温度低于-25℃时可加速，到-80℃之后可直接投入液氮内(-196℃)。复苏细胞应采用快速融化的方法，这样可以保证细胞外结晶在很短的时间内即融化.单核细胞冻存液配比

细胞冷存液***头轻柔吹打混匀,Z成细胞悬液。4.将离心管中的细胞悬液分装与细胞冻存管中，每管1mL或1.5mL。5.将分装好的细胞直接冻存于-80℃冰箱中，可稳定冻存数年。6.如若长期保存，可在次日转移至液氮中。操作步骤:细胞复苏：1.从-80℃冰箱或液氮中取出冻存细胞，立即放入37℃水浴槽中快速解冻。2.待冻存管中细胞悬液完全融化后，立即1000rmp离心5分钟，完全除去上清。3.加入1mL细胞培养基于冻存管中，***头轻柔吹打悬浮细胞，并转移细胞于细胞培养皿或者培养瓶中。单核细胞冻存液配比“细胞冻存液的细胞存活率和活力高，批次性差异小.

细胞冻存的操作步骤是什么配制含10%DMSO或甘油、10～20%小牛血清的冻存培养液；取对数生长期的细胞，去除旧培养液，用PBS清洗。去除PBS，加入适量胰蛋白酶（覆盖培养皿表面）把单层生长的细胞消化下来；离心1000rpm，5min；去除胰蛋白酶，加入适量配制好的冻存培养液，用吸管轻轻吹打使细胞均匀，计数，调节冻存液中细胞的**终密度为5×106/ml～1×107/ml；将细胞分装入冻存管中，每管1～1.5ml；在冻存管上标明细胞的名称，冻存时间及操作者；冻存：标准的冻存程序为降温速率-1～-2℃/min；当温度达-25℃以下时，可增至-5℃～-10℃/min；到-100℃时，则可迅速浸入液氮中。也可将装有细胞的冻存管放入-20℃冰箱2h，然后放入-70℃冰箱中过夜，取出冻存管，移入液氮容器内。

冻存（Cryo-preservation）是一个将细胞器，细胞，组织，细胞外基质，***或者任何其他的在没有经调控的化学动力学因素影响下容易受损的生物组成物，将他们通过迅速降低到非常低的温度来进行保存（通常是使用固态二氧化碳的营造-80°C条件或者是使用液氮的营造的-196°C条件）。在很低的温度下，任何的酶和可能会对生物材料造成伤害的化学活跃因素都因为温的环境从而有效地解决。。就冻存这样的方法而言，人们努力寻找一个合适的低温，这样的温度不会造成在结冰过程中的由于冰晶的形成从而导致细胞的附加伤害，这是冻存中的头等大事。冻存细胞负**概放多久?

如果将细胞暴露在这样高溶质的溶液中且时间过长，细胞膜上脂质分子会受到损坏，细胞便发生渗漏，在复温时，大量水分会因此进入细胞内，造成细胞死亡。这种因保存溶液中溶质浓度升高而导致的细胞损伤称为溶质损伤或称溶液损伤。当温度进一步下降，细胞内外都结冰，产生冰晶损伤。但是如果在溶液中加入冷冻保护剂，则可保护细胞免受溶质损伤和冰晶损伤。因为冷冻保护剂容易同溶液中的水分子结合，从而降低冰点，减少冰晶的形成，并且通过其摩尔浓度降低未结冰溶液中电解质的浓度，使细胞免受溶质损伤，细胞得以在很低温条件下保存采取逐级降温保存：4℃放置20min，-20℃放置30min，-70℃?过夜，***置于液氮罐中长期存储。hela细胞冻存液不含dmso

细胞冻存液需要现用现配么?单核细胞冻存液配比

每天换液，目测培养物以评估生长状态直到下一次传代。解冻复苏后的6-7天，查看是否有适合传代的（中心致密的）未分化的集落。注意：解冻复苏后如果只能观察到少数的未分化的集落，只选取这些未分化的集落进行传代，并将它们铺板至相同大小的新包被的培养孔（不进行稀释传代）。TBD798完全冻存液制备：1.取新鲜抗凝血（枸橼酸钠抗凝），300g，离心10min。2.自体血浆制备：（1）取上半部分2/3的血浆层，放入50ml离心管中，56℃，灭活30min（2）取出离心管，放入-20℃静置10min（3）取出离心管，4℃，1100g，离心15min（4）取出上面部分澄清血浆层，放入新50ml离心管中单核细胞冻存液配比

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