Real-time PCR原理:基于探针的化学法,Real-time PCR应用一个或多个荧光标记的寡核苷酸探针检测PCR扩增产物;依赖荧光能量共振传递(FRET)检测特异性扩增产物,单单检测特异性扩增产物,DNA及RNA定量;基因表达验证;等位基因鉴别;SNP分型;病原体和病毒检测;多重PCR,探针和目标片段的特异性结合产生荧光信号,因此减少了背景荧光和假阳性;探针可标记不同波长的荧光基团,用于多重PCR反应。对于不同的靶序列需要合成不同的探针,原料成本较高。许多疾病的未知病因的测序正在通过聚合酶链反应得到解决。武汉细胞数字PCR服务
所谓real-timeQ-PCR技术,是指在PCR反应体系中加入荧光基因,利用荧光信号累积实时监测整个PCR进程,之后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。在real-time技术的发展过程中,两个重要的发现起着关键的作用:(1)TaqDNA多聚酶的5′核酸外切酶活性的发现,它能降解特异性荧光记探针,因此使得间接的检测PCR产物成为可能。(2)此后荧光双标记探针的运用使在一密闭的反应管中能实时地监测反应全过程。这两个发现的结合以及相应的仪器和试剂的商品化发展导致real-timeQ-PCR方法在研究工作中的运用。珠海细胞Real-time PCR原理实时荧光定量PCR是目前确定样品中DNA(或cDNA)拷贝数较敏感、较准确的方法。
Real-time PCR双荧光标记探针设计原则:具体的其他要求可以具体联系设计公司,拿到合成好的引物,需要先确认引物的性能。可以用这对引物先扩增梯度稀释后的标准品(标准品介绍见后续内容)。由不同梯度标准品的加量和其对应的Ct值,描绘出一条标准曲线。这里要注意根据标准曲线得到的参数是非常重要的。引物性能确认:1.决定系数R2大于0.98,越接近于1,结果越可靠。2.扩增效率一般要求在0.8-1.2,越接近于1,越好。3.检测的灵敏度,必须确认,通常要求35个循环以内,一般可以得到比较好的定量结果,30个循环以内,没有非特异性扩增产生。4.NTC是必须要确认的,通常要求30个循环内没有引物二聚体产生。
聚合酶链式反应生物学研究的历史中占据了重要的地位。以此为基础发展出包括Real-time PCR在内的多项应用技术。自诞生后Real-time PCR技术持续发展,从简单的增扩到整个PCR过程,Real-time PCR表现出比PCR更敏感、更明确的定量分析特性和对识别等位基因的能力。不少人以为real-time就是意味着可以在显示器上看到每个循环增扩曲线的增长。事实并非如此,早期的软件不能在运行期间提供可视化的增扩曲线。主要是因为SDS软件采用整个平台较终的数据执行数据分析工作,而不是分析每个单独的反应循环。对某些设备来说,必须向分析软件提供实时的数据,有些设备则不需要。前一种设备允许软件实时跟踪每个加样口的增扩曲线,同时显示在电脑屏幕上。扩增后用内切酶消化PCR产物,竞争性模板的产物被酶解为两个片段。
聚合酶链式反应准备:PCR引物设计,PCR反应中有两条引物,即5′端引物和3′引物。设计引物时以一条DNA单链为基准(常以信息链为基准),5′端引物与位于待扩增片段5′端上的一小段DNA序列相同;3′端引物与位于待扩增片段3′端的一小段DNA序列互补。引物设计的基本原则:引物长度:15-30bp,常用为20bp左右。引物碱基:G+C含量以40-60%为宜,G+C太少扩增效果不佳,G+C过多易出现非特异条带。ATGC很好随机分布,避免5个以上的嘌呤或嘧啶核苷酸的成串排列参照。聚合酶链式反应准备:引物内部不应出现互补序列。上海骨头定量PCR应用
PCR可能是分子生物学中使用很较广的技术。武汉细胞数字PCR服务
为了便于对所检测样本进行比较,在real-timeQ-PCR反应的指数期,首先需设定一定荧光信号的域值,一般这个域值(threshold)是以PCR反应的前15个循环的荧光信号作为荧光本底信号(baseline),荧光域值的缺省设置是3~15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍。如果检测到荧光信号超过域值被认为是真正的信号,它可用于定义样本的域值循环数(Ct)。Ct值的含义是:每个反应管内的荧光信号达到设定的域值时所经历的循环数。研究表明,每个模板的Ct值与该模板的起始拷贝数的对数存在线性关系,起始拷贝数越多,Ct值越小。利用已知起始拷贝数的标准品可作出标准曲线,因此只要获得未知样品的Ct值,即可从标准曲线上计算出该样品的起始拷贝数。武汉细胞数字PCR服务
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