在体光纤成像记录科研人员从光源扫描方式、光束偏转方式和重建算法等方面开展研究。采用一个点阵光源，用电控的方法扫描不同方向的光束。与现有的振镜扫描系统相比，该方法结构紧凑，扫描速度快，可以实现系统集成。利用声光偏转器件可实现光束偏转，并结合波导器件实现多模光纤成像。对于单光纤成像系统，尽管实际测量时只需拍摄一次图像，但在传输矩阵的构建、相位场的计算以及图像重建过程中，计算量大、计算时间长，因此新的算法也在不断被研究。目前单光纤成像技术水平与实际应用需求之间还有较大距离，但成像方法和关键部件技术的快速进步为将来实现小型化、全固态和算法嵌入提供了有力支持。医生可以在体光纤成像记录直观地进行诊断和分析。常州在体实时单光纤成像技术

在体光纤成像记录系统还包括：首先一物镜；所述首先一物镜位于所述第三多模光纤与所述待成像物体之间；所述首先一物镜与所述第三多模光纤的另一端之间的距离为所述首先一物镜的工作距离，所述首先一物镜与所述待成像物体之间的距离为所述首先一物镜的工作距离，所述首先一物镜位于所述第三多模光纤的光束出射方向的正前方，且所述首先一物镜的中心点与所述第三多模光纤的中心点位于同一直线，以使所述首先一光束经过所述第三多模光纤照射至所述首先一物镜；首先一物镜，用于对所述首先一光束进行放大，将放大后的首先一光束照射至所述待成像物体；放大后的首先一光束经所述待成像物体反射，得到所述第二光束，以使所述第二光束照射至所述首先一物镜。扬州在体光纤成像记录服务在体光纤成像记录也缺乏对不同储存条件的对比评价。

在体光纤成像记录荧光素酶的每个催化反应只产生一个光 子 , 通常肉眼无法直接观察到, 而且光子在强散射性的生物组织中传输时, 将会发生吸收、 散射、 反射、 透射等大量光学行为 。 因此，必须采用高 灵敏度的光学检测仪器（ 如CCD camera）采集并定量检测生物体内所发射的光子数量, 然后将其转换成图像， 在体生物发光成像中的发光光谱范围通常为可见光到 近红外光波段, 哺乳动物体内血红蛋白主要吸收可见光, 水和脂质主要吸收红外线, 但对波长为 590~1500nm的红光至近红外线吸收能力则较差， 因此, 大部分波长超过600nm的红光, 经过散射、吸收后能够穿透哺乳动物组织, 被生物体外的高灵敏光学检测仪器探测到, 这是在体生物发光成像的理论基础。

在体光纤成像记录直接标记法不涉及细胞的遗传修饰，标价能够在体外培养时主动与细胞结合，也可以将标记直接注射到动物体内，间接标记法，将报告基因引入细胞，并翻译成酶、受体、荧光或生物发光蛋白如果报告基因的表达是稳定的，标记的细胞可以在整个细胞的生命周期中被观察到。由于报告基因通常被传递给后代细胞，因此细胞增殖也能够得到体现。体内标记是指将探针直接注射进入机体，常用的标记方法是静脉注射氧化铁纳米颗粒。光学成像方法可分为基于荧光的方法和基于生物发光的方法。用成熟的在体光纤成像记录进行体外检测。

在体光纤成像记录的根本缺点是光的组织穿透率低。由于吸收和散射，荧光发射的可见光谱中的光只能穿透几百微米的组织。这个问题限制了大多数光学方法在小动物或人类表面结构研究中的应用。使用近红外光谱能够提高信号的组织穿透能力，并能降低了组织的自体荧光。在体外将荧光探针与细胞共孵育后注射入体内，用规定波长的光激发荧光探针，较后用高灵敏度的摄像机记录发射的光子。有机荧光染料价格低廉，毒性可控，但当观察时间较长时，容易发生光漂白。量子点具有高度的光稳定性，有望代替传统荧光探针。但由于大多数量子点都含有镉，限制了其临床应用。在体光纤成像记录就是生物样本的造影技术。常州在体实时单光纤成像技术

在体光纤成像记录要求共聚焦系统具有较高的灵敏度。常州在体实时单光纤成像技术

小动物在体光纤成像记录可根据实验需要通过尾静脉注射、皮下移植、原位移植等方法接种已标记的细胞或组织。在建模时应认真考虑实验目的和选择荧光标记，如标记荧光波长短，则穿透效率不高，建模时不宜接种深部脏器和观察体内转移，但可以观察皮下瘤和解剖后脏器直接成像。深部脏器和体内转移的观察大多选用荧光素酶标记。小鼠经过常规麻醉（气麻、针麻皆可）后放入成像暗箱平台，软件控制平台的升降到一个合适的视野，自动开启照明灯（明场）拍摄首先一次背景图。下一步，自动关闭照明灯，在没有外界光源的条件下（暗场）拍摄由小鼠体内发出的特异光子。明场与暗场的背景图叠加后可以直观的显示动物体内特异光子的部位和强度，完成成像操作。值得注意的是荧光成像应选择合适的激发和发射滤片，生物发光则需要成像前体内注射底物激发发光。常州在体实时单光纤成像技术