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广州PCR法病毒检测试剂盒

来源: 发布时间:2024-01-29

《CAR-T细胞治  疗产品质量控制检测研究及非临床研究考虑要点》一文提到:目前RCR/RCL病毒检测方法主要有指示细胞培养法、ELISA法(p24蛋白测定)、PCR/q-PCR法(通过psi-gag或VSV-G聚合酶链反应)和转录酶活性测定法(PERT)等。其中,利用指示细胞培养法对生产过程中的病毒(上清液、病毒生产终末期细胞)存在的RCL进行培养扩增,并在培养终点进行重复检测是FDA推荐的RCL检测方法。

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美国FDA要求对于采用γ-逆转录病毒载体和慢病毒载体的产品,需要在整个生产过程及不同阶段进行RCR复制型逆转录病毒/RCL复制型慢病毒检测,针对载体生产用主细胞库、工作细胞库、生产终末细胞、载体上清液及在体外培养超过4天的载体转到细胞进行检测。针对慢病毒载体使用时RCL的检测,除了金标准——指示细胞培养法,还需要选择2种不同原理的快检方法对其进行补充检测。RT-PCR法具备操作便捷快速、特异性好、灵敏度高、稳定性好等优点,是RCR/RCL补充检测的优   选方法。苏州复制型慢病毒检测操作流程重组腺相关病毒检测。

实时定量PCR方法(Q-PCR法)复制型慢病毒检测原理:目前许多CAR-T申报企业采用Q-PCR/PCR方法直接测定终产品中的VSV-G序列或psi—gag序列,考虑到细胞产品一般需要新鲜输注或快速冻存的特殊性,采用基于细胞培养方法,时间周期较长,建议在细胞产品制备过程中进行多控制(如对慢病毒载体及生产终末细胞采用基于细胞培养方法测定RCL,以确保生产工艺过程中不存在RCL的风险),细胞终产品阶段可采用快速放行方法(如PCR方法)。基于Q-PCR法测定复制型慢病毒载体,主要是针对VSV-G序列设计定量引物,通过绘制标准曲线,对RCL予以定量。

复制型病毒/病毒载体回复突变(ReplicationCompetentVirus,RCV),可产生于病毒载体制造过程中的所有步骤当中。并且,RCV感   染宿主细胞后能随宿主细胞在培养液中增殖、扩增对人体健康具有严重的隐患,是免细胞治     疗类产品,如CAR-T产品的主要安全性风险之一。近年来,CAR-T细胞制备过程中,伴随载体的不断升级优化,重组产生的复制型逆转录病毒/慢病毒(ReplicationCompetentRetrovirus/Lentivirus,RCR/RCL)逐渐降低,但产生RCR/RCL的风险隐患至今仍不能完全排除。由2022年5月发布的《体外基因修饰系统学研究与评价技术指导原则(试行)》指出RCR/RCL检测作为安全性检测在细胞的研发和生产过程中至关重要,相关产品不得检出RCR/RCL,可知病毒载体相关产品中,RCR/RCL病毒检测至关重要。qPCR法复制型慢病毒检测的工作流程。

rcAAV复制型腺相关病毒检测过程中,qPCR反应体系配制环节有哪些注意事项?①qPCR的整个操作要低温环境进行,防止模板的降解,试剂避免反复冻融。②配制反应体系前试剂要充分混匀,除了模板外的反应体系要统一配制,然后再分配至qPCR管中,配制的时候考虑到操作或耗材带来的损耗需要多配若干个反应所需体系。③添加模板的时候注意头要排尽,不求快,平行加样。加样后要进行离心,将液体集中在管底,离心后注意观察反应体系液面是否平整,气泡是否排尽。④每个样品建议做3个复孔,每次除了样品以外还要加阳性对照和阴性对照。复制型病毒检测试剂盒适用性样品有哪些?rcAAV病毒检测操作流程

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用qPCR法进行rcAAV复制型腺相关病毒检测时,出现扩增曲线末尾起跳的原因可能是什么?①阴性质控或无模板对照曲线末尾出现起跳情况,考虑环境存在污染所致,建议对实验环境做好控制,如使用低吸附带滤芯头和低吸附ep管,保证实验分区(样品处理区、试剂保存及配制区、PCR扩增区)、用DNA清除剂处理环境等。②待测样品曲线末尾出现起跳情况,在确保阴性质控或无模板对结果正常的情况下,可以进行复测,复测结果一致,则考虑是样品中待测物浓度较低所致。广州PCR法病毒检测试剂盒

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