DNA提取试剂盒是根据氯化芐法构建的，能够从样本中提取基因组DNA的试剂盒。氯化苄具有能将含有纤维素等的细胞壁中的羟基苄基化，从而破坏细胞壁的特性。本制品利用了氯化苄的这一特性，将植物样品冻结融解后，再使用PipetTip的前面将植物样品在Microtube壁上数次按压即可破坏细胞壁。本法与传统方法相比，省去了液氮研磨等烦琐步骤，有利于一次性处理大量样品。而且，本制品经过了改良，热处理时间只需15分钟，使用本制品从实验开始至水相回收只需30分钟时间。得到的基因组DNA可以进行PCR扩增及限制酶处理等。RNA提取可以用于分析RNA的序列和结构。长沙外泌体RNA提取

DNA提取的一些问题，提取的细菌基因组DNA有降解，为什么？确认选用的培养菌体是否新鲜，如果菌体需要保存时，请于-80℃保存。起始菌液量过多，导致菌液裂解不充分，部分DNA降解。菌体本身富含DNA酶活性，加入Digestionsolution后再加20uL0.5MEDTA溶液来抑制内源性核酸酶。提取的基因组DNA生物活性差，为什么？提取的基因组DNA中盐分浓度过高，请严格按照说明书操作。提取的基因组DNA中含有乙醇。离心的速度和时间应该严格遵循说明书要求进行。长沙外泌体RNA提取RNA提取可以使用不同的组织或细胞类型来比较RNA的表达。

骨组织RNA提取之其它骨组织破碎方法：a.取100mg骨组织加入1ml预热的裂解液CLB（已加有P的LANTaid）高速均质仪粉碎匀浆。或者取100mg液氮冷冻包埋切片粉碎的骨头加入裂解液CLB（已加有P的LANTaid）粉碎匀浆。b.立刻接操作步骤的步骤。c.短时放回65°C水浴中（10min），中间偶尔颠倒1-2次帮助裂解。将裂解物4°C13,000rpm离心10分钟，沉淀不能裂解的碎片。取裂解物上清（在不超过基因组DNA清理柱能力的情况下可以取更多的上清，这样可以提高产量）转到一个新离心管。加入上清体积一半的无水乙醇(0.5体积)，此时可能出现沉淀，但是不影响提取过程，立即吹打混匀，不要离心。若上清表面有漂浮物，用吸头挑开吸取下面液体即可。将混合物(每次小于720μl，多可以分两次加入)加入一个基因组清理柱中，（清理柱放入收集管中）13,000rpm离心2分钟，弃掉废液。

骨组织RNA提取之其它骨组织破碎方法：立刻将混合物(每次小于720μl，多可以分两次加入)加入一个吸附柱RA中，（吸附柱放入收集管中）13,000rpm离心2分钟，弃掉废液。确保离心后液体全部滤过去，膜上没有残留，如有必要，可以加大离心力和离心时间。加700μl去蛋白液RW1，室温放置1分钟，13,000rpm离心30秒，弃掉废液。加入500μl漂洗液RW（请先检查是否已加入无水乙醇!），13,000rpm离心30秒，弃掉废液。加入500μl漂洗液RW，重复一遍。将吸附柱RA放回空收集管中，13,000rpm离心2分钟，尽量除去漂洗液,以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。DNA提取的步骤包括细胞破碎、DNA分离、纯化和洗涤等。

DNA提取的几种方法介绍，浓盐法：利用RNP和DNP在电解溶液中溶解度不同，将二者分离，常用的方法是用1M氯纳提取化钠抽提，得到的DNP黏液与含有少量辛醇的氯仿一起摇荡，使乳化，再离心除去蛋白质，此时蛋白质凝胶停留在水相及氯仿相中间，而DNA位于上层水相中，用2倍体积95%乙醇可将DNA钠盐沉淀出来。也可用0.15MNaCL液反复洗涤细胞破碎液除去RNP,再以1MNaCL提取脱氧核糖蛋白，再按氯仿---异醇法除去蛋白。两种方法比较，后种方法使核酸降解可能少一些。DNA提取的样品准备之生物组织：液氮匀浆法。长沙外泌体RNA提取

DNA提取的原则，核酸样品中不应存在对酶有抑制作用的有机溶剂和过高浓度的金属离子。长沙外泌体RNA提取

RNA提取一般在pH值低于7时进行。在碱性pH值下，由于核糖的2'位置存在OH基团，RNA更容易被碱性水解降解。此外，RNA在酸性pH值下倾向于保留在水相中。外泌体DNA提取注意事项：1.实验过程中较好戴一次性干净手套、口罩，使用超纯水。2.如样本量不足200μL，请用0.85%生理盐水补至200μL。RNA提取中常见的问题之RNA中有基因组DNA污染：材料中核酸含量高：脾脏、胸腺等组织中的核酸含量较高，可进行多次酚/氯仿抽。提以去除多余的DNA。也可以在提取后加入DNaseI处理，降解DNA。材料过量：增加试剂用量。长沙外泌体RNA提取