样品的新鲜程度直接影响实验的结果。由于次生代谢产物的影响，会导致信号峰过宽，甚至检测不到信号峰的情况。嫩叶的选择要选择新鲜、完全展开、无虫咬、无枯萎、分裂不活跃的部位。嫩叶的检测效果明显好于较老的叶片。倍性检测首先需要裂解液裂解细胞获得游离细胞核，然后用 DAPI 染液将细胞核染色体上的 A-T 碱基染色，再用倍性分析仪仪器检测细胞核里被染色的 A-T 碱基发出的荧光强度。比如二倍体的荧光强度是 100（横坐标），那么四倍体的荧光强度就是 200（横坐标），如下图所示，用 DAPI 染色法检测蚕豆的倍性。结果的纵坐标是细胞数量的显示，通常来说，信号峰高说明信号比较好，杂质少。智能型、便携设计CD4细胞监测流式细胞仪适合HIV/AIDS患者CD4细胞监测。进口智能型倍性分析仪染色速度

上机（CyFlow Ploidy Analysere倍性分析仪）操作前，样品保存要求：新鲜叶片滤纸打湿后包裹样品保湿，放入自封袋中做好标记，再放入泡沫箱密封。若短期内不能检测。可将叶片使用硅胶干燥法进行保存。每一个测试需求的叶片面积是0.5 cm2，大约小拇指甲盖大小。准备测试的叶片应为次量的 4 倍以上，已备实验重复使用。准备标样，要有已知倍性的标样作为参照，来预测待测样品的倍性，检测结果是一个相对值，并非相对值。特别注意:一定要随样本寄出同物种亲缘较近的已知倍性样本，作为参照，否则样本无法确定倍性。国产双螺旋生物仪器倍性分析仪试剂盒流式细胞仪具有制样简单用量少、操作高效快速且数据重复性高等优势。

在遗传学上，一般是通过染色体的数量来确定植物的倍性，随着科技的发展，目前植物倍性鉴定有多种方法。在形态学层次上，观察不同倍体植株的形态特征的差异，可间接确定植株的倍性，但准确性不够高，而且要在植株生长发育的特定时期才能鉴定，往往难以及时采取染色体加倍措施，致使育种材料不能得到及时利用，故常不被采用。在分子生物学层次上，利用流式细胞仪测定植物基因组DNA含量，即C值的大小，也可直接确定再生植株的倍性。由于该方法所用的仪器设备昂贵，普通实验室难以具备，故制约了该方法的应用和推广。在细胞学层次上，有染色体计数直接鉴定方法和叶片保卫细胞叶绿体计数间接鉴定法。染色体计数法准确、可靠，但费时而且需要熟练的细胞学操作技术。

菌类的基因组大小信息很少，只有不到 2000 个物种的信息可用。到目前为止，大多数记录都是使用静态的、基于显微镜的细胞计数方法获得的，或者来自基因组测序项目。流式细胞术现在被认为是获得基因组大小测量的较先进方法，并且可以使用适当的方法和 DNA 标准，从而能够以快速、可靠和廉价的方式分析大多数基因组大小范围。平均菌类基因组大小为 60 Mbp，但大小因系统发育而异，从 2.2到 3706 Mbp 。在几个菌类进化枝中，基因组大小的扩张似乎伴随着植物共生或植物寄生的进化，与植物相互作用的菌类似乎比腐生菌和与动物相互作用的菌类具有更大的基因组。虽然用于核 DNA 定量的流式细胞术在植物科学中常规用于基因组大小和倍性研究，但其在菌类生物学中的使用仍然很少。此处描述了适当的标准、方法和比较好实践，旨在促进流式细胞术在菌类基因组大小测量中更普遍和更多的应用。CyFlow Analyser倍性分析仪有365nm的紫外光源/532nm的Nd-YAG绿色激光器。

较简单的流式细胞仪可用于检测细胞特征，包括细胞大小、细胞数量、细胞周期和细胞表型分析等。该技术可为研究人员提供单个细胞的高度特异性信息。从表达绿色荧光蛋白的细胞系到来源于组织的异质细胞群体，都是典型的流式样品类型。实现高效流式细胞分析的关键要求是将样品制备成单细胞悬液，从而确保每个细胞都能进行数据分析。它在20世纪50年代开始被用于检测细胞的体积，可在细胞随快速流动的液流直线通过流动室时进行检测。从那时起，许多工程师和研究人员不断创新，带来了现代流式细胞仪，利用流式细胞仪，溶液中的细胞以每秒10,000个细胞（或更多）的速度通过仪器的激光检测区，进而对细胞进行检测和分析。利用流式细胞仪，溶液中的细胞以每秒1万个细胞的速度通过仪器的激光检测区，进而对细胞进行检测和分析。珠三角配备532nm光源倍性分析仪配套试剂

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流式细胞术的特点：1、检测对象：单细胞悬液或生物颗粒；2、检测特点：单细胞水平分析；3、检测参数：多参数荧光信号；4、检测速度：高速，比较高达上万个细胞/秒；5、检测结果：精度高、准确性好；可以对目标细胞进行分选。分析型流式细胞仪：细胞样本分析后再进入废液桶，不能回收利用。分选型流式细胞仪：既能流式分析，还能对分析的目的细胞进行分选。进样管道比较长，还需要保持无菌状态，所以分选型流式细胞仪一般只用于分选。进口智能型倍性分析仪染色速度

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