胶原蛋白分离提纯实验方案：提取鼠尾胶原蛋白的实验步骤：1、使用溶解有一定比例胃蛋白酶的酸溶液对初步处理的鼠尾腱进行酶解，持续一段时间待混合物变成无色、透明、粘稠液体后即可在4℃，5000g的离心力下离心20min，收集上清即为粗制鼠尾胶原蛋白原液。2、将一定浓度的氯化钠溶液加入其中，持续搅拌直至白色絮状沉淀从溶液中析出，继续加入氯化铵直至沉淀不在析出为止，4℃，5000g的离心力下离心20min后获得白色沉淀。沉淀物加入一定浓度的醋酸溶液中溶解。3、将溶解后的鼠尾胶原蛋白溶液继续反复进行盐析处理，重复步骤2的过程2~4次。_x005f_x005f_x005f_x005f_x005f_x005f_x005f_x000c_鼠尾胶原蛋白经SDS-PAGE蛋白质电泳。论鼠尾胶原能促进毛细胞贴壁，涂布鼠尾胶原有利于膜片钳实验的长时程记录，并且制作简便，成本低廉。开盖在超净台上过夜晾干，也可以在室温放置1小时后。正规鼠尾胶原单价

鼠尾胶原醋酸溶解：1．将鼠尾胶原加入到0.1M的醋酸中，制备成浓度为0.1%的溶液。在室温中搅拌1-3小时直到完全溶解。2．建议将溶液转移到拧口的玻璃瓶中，并小心的在瓶底铺上一层氯仿。氯仿的量约为胶原溶液的10%。不要晃动或搅拌。在2-8度中放置过夜。在无菌条件下转移上层的胶原溶液。我们不建议用过滤的方法无菌化。已经发现该方法会导致丢失蛋白。3．稀释一定数量的胶原溶液。4．按照6-10ug/cm2的浓度包被培养瓶。在室温或37度结合数小时或者2-8度过夜。5．从包被表面除去多余的液体。过夜干燥。如果胶原溶液不是无菌的，这时候可以在无菌细胞操作室中暴光在紫外线下过夜消毒。在接种细胞前用无菌的水漂洗。正规鼠尾胶原单价免疫组织化学结果和扫描电镜证实所培养的细胞具有典型的分泌上皮细胞特征。

鼠尾胶原蛋白等实验技术应用：干细胞、血管内皮细胞等多种「难伺候」的细胞，以及一些组织在体外培养时，需要在模拟体内环境的细胞外基质中生长，胶原蛋白和纤粘蛋白正是细胞外基质的主要组成部分，富含1型胶原蛋白大鼠尾部也成了实验室用胶原蛋白的较主要来源。鼠尾取血剪下几毫米小鼠尾巴、在小鼠尾静脉上划一道小口、用注射器抽取的操作都可以得到这种鲜红的。它可以用于监测小鼠血液成分的变化，确认小鼠是否患上了糖尿病或者某些治好能够改变小鼠的血糖等。比起心脏和眼部取血，实验用鼠尾尖取血的取血量较小，但取血之后，小鼠还能继续下一步建模或者实验，完全没有性命之忧。

鼠尾胶原蛋白的提取方法：1.一种生物医用鼠尾胶原蛋白的提取方法，其特征在于，包括以下步骤:(1)将无组织纤维、脂肪和多糖残留的鼠尾腱，真空冷冻干燥备用；(2)冻干鼠尾腱经低温冻干粉碎至200?400目；(3)在冰水浴中将粉碎的鼠尾腱在醋酸溶液中溶胀，鼠尾腱与醋酸的固液比为I克:10mL?I克:120mL，期间不断搅拌，防止冻结成块，得到胶原溶胀液；(4)称取胃蛋白酶加入到胶原溶胀液中，鼠尾腱与蛋白酶质量比为50:I?100:1，在4°C，48?74小时酶解，期间间歇性搅拌。放上小玻片，自然干燥后小玻片就固定于培养瓶之中。

使用方法：1、细胞培养器皿的表面包被：以包被浓度为2μg/cm2为例，用无菌0.006mol/L乙酸将胶原蛋白稀释到0.012mg/mL。加到相应的培养器皿中，确保胶原蛋白溶液铺满器皿的表面。开盖在超净台上过夜晾干，也可以在室温放置1小时后，用PBS洗3~4次后直接使用。包被好的器皿在4~25℃至少可保存三个月以上的时间。2、三维胶原凝胶的制备：A、无细胞三维胶原凝胶的制备（以配制1mg/mL三维胶1mL为例）将200μL本品加到置于冰浴的离心管中，加入690μL双蒸水，然后加到12μL0.1mol/LNaOH中（如果反过来把12μL0.1mol/LNaOH加到胶原溶液中，会由于NaOH不能迅速混匀而产生局部的胶原凝结），立即混匀。再加入100μL10×PBS或10×培养液，混匀后立即加到培养器皿中（混匀后pH为7左右，如果PBS或培养液中没有加酚红，初次使用时需要测定pH值）。将培养器皿在室温放置20min待胶凝固后，转移到培养箱内。如果配制中使用的是10×PBS，使用前需要加入适当体积的细胞培养液预平衡。鼠尾胶原蛋白的用途很普遍，可用于化妆品，工业和食品生产等领域。鼠尾胶原单价

吸去生理盐水，将尾腱称重（0.5-1克）。正规鼠尾胶原单价

鼠尾胶原使用方法：1、细胞培养器皿的表面包被以包被浓度为2μg/cm2为例，用无菌0.006mol/L乙酸将胶原蛋白稀释到0.012mg/mL。加到相应的培养器皿中，确保胶原蛋白溶液铺满器皿的表面。开盖在超净台上过夜晾干，也可以在室温放置1小时后，用PBS洗3~4次后直接使用。包被好的器皿在4~25℃至少可保存三个月以上的时间。三维胶原凝胶的制备：A、无细胞三维胶原凝胶的制备（以配制1mg/mL三维胶1mL为例）将200μL本品加到置于冰浴的离心管中，加入690μL双蒸水，然后加到12μL0.1mol/LNaOH中（如果反过来把12μL0.1mol/LNaOH加到胶原溶液中，会由于NaOH不能迅速混匀而产生局部的胶原凝结），立即混匀。再加入100μL10×PBS或10×培养液，混匀后立即加到培养器皿中（混匀后pH为7左右，如果PBS或培养液中没有加酚红，初次使用时需要测定pH值）。将培养器皿在室温放置20min待胶凝固后，转移到培养箱内。如果配制中使用的是10×PBS，使用前需要加入适当体积的细胞培养液预平衡。正规鼠尾胶原单价