细胞转染的注意事项：1.细胞铺板密度用于转染的较佳细胞密度根据不同的细胞类型或应用而异。因转染试剂对细胞有毒害作用，细胞太少，容易死。一般转染时，贴壁细胞密度为70%-90%，悬浮细胞密度为2-4×106细胞/ml，确保转染时细胞没有长满或处于静止期。因为转染效率对细胞密度很敏感，所以在不同实验间保持一个基本的传代步骤很重要。铺板细胞数目的增加可以增加转染活性和细胞产量。细胞的融合度必须要达到90%才能做启动子的选择获得高转染活性所需选择的启动子依赖于选用的细胞系和要表达的蛋白。CMV启动子在大多数细胞类型中可以获得高表达活性。同其他启动子，如SV40和RSV(劳斯肉瘤细菌)相比，在BHK-21中其活性较高。这三种细菌启动子在T细胞来源的细胞系，如Jurkat中组成表达水平较低。转染后在培养基中加入PHA-L和PMA可以启动Jurkat细胞中CMV启动子，而单PMA就足以启动KG1和K562(人骨髓瘤白细胞)中的CMV启动子。SV40启动子的表达在含有大T抗原(存在于COS-1和COS-7)时会提高，因为大T抗原可以刺激染色体外的合成。瞬时转染与稳定转染常规转染技术根据基因表达时间的长短可分为两大类。上海正规细胞高效转染试剂供应商

细胞转染实验简介：实验材料与器材：1、材料293T细胞、MyoD表达质粒和EGFP表达质粒、DMEM培养基、链霉素/青霉素(双抗)、FCS(小牛血清)、PBS(磷酸盐缓冲溶液)、胰酶/EDTA消化液、转染试剂(TransFast)2、器材20ul/200ul/1ml微量移液器和Tip头酒精灯、废液缸、血球计数板、涡旋振荡器、恒温水浴箱、台式离心机、35mm培养皿、转染管、15ml离心管、观察用倒置显微镜荧光显微镜和CCD。利用脂质体转染法较重要的就是防止其毒性，因此脂质体与质粒的比例，细胞密度以及转染的时间长短和培养基中血清的含量都是影响转染效率的重要问题，通过实验摸索的合适转染条件对于效率的提高有巨大的作用。正规细胞高效转染试剂厂家因为DNA摄入效率和表达水平在不同实验中差异较大，实验必须很小心。

细胞转染效率低下的几个大坑：1.准备不足做脂质体转染的时候，在开展正式实验前要多做预试验，优化转染条件。优化转染条件包括：脂质体的用量、DNA密度、细胞密度、脂质体和DNA混合孵育时间等等。2.电压过大做电转的时候，如果电压太大，往往会发生细胞大量死亡的情况。不同的细胞，需要的电压是不一样的。这就要求我们多做预实验，多摸索条件。对于大多数细胞来说，其较佳电压位于250-1250v/cm。另外，就是进行转染的细胞应该处于对数生长期。处于对数生长期的细胞的抗损伤能力是较强的。细胞浓度应该处于5x106到1x107／mL之间。每次转染的质粒应该控制在4-6μg，如果﹥10μg，转染效率也较大降低。电击后，应该将DNA和细胞混合液在室温下放置10分钟，使细胞恢复损伤。

细胞转染的常用方法：人工脂质体法原理：带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物，进而可被细胞内吞稳定转染/瞬时性转染。这种方法几乎适用于所有细胞，转染效率高、重复型好，但转染时需要去除血清，转染效果随细胞类型变化大。实验步骤：在单独试管中分别稀释核酸及转染试剂→脂质体与核酸的磷酸骨架结合，形成复合物→脂质体上的正电荷有助于复合物与细胞膜结合→复合物通过内吞作用进入胞浆→分析细胞瞬时基因表达或沉默情况。重新接种于培养皿或瓶，较好在转染前4小时换一次新鲜培养液。

如何高效率实现细胞转染：DNA转染导入细胞胞浆内的DNA不能穿过细胞核的核膜（"核屏障"）。在细胞有丝分裂过程中核膜溶解，DNA进入细胞核才有可能。为此，细胞处于分裂期对DNA转染是至关重要的，并且处于分裂期的细胞比例必须尽可能大才能实现高效转染。DNA转染机制示意图如下所示：转染RNA(siRNA/miRNA/mRNA)对于RNA转染是没有"核屏障"的，因为RNA不需要进入细胞核发挥其生物学效应，因此细胞分裂对它没有影响。转染试剂的选择理想的转染试剂选择可以使您的实验如虎添翼！真核细胞的先天免疫系统，使它们能够检测外来物质如脂多糖、细菌或细菌核酸和蛋白质，并克制潜在病原体的入侵。此外，细胞通过信使分子向临近细胞传递发现有害物质的信号。因此，这些临近细胞甚至无需接触病原体即可采取防御方式。这种细胞先天免疫系统也是转染成功的一个障碍。瞬时转染的细胞中，外源基因得以表达但它们并不会整合到细胞的基因组中。济南正规细胞高效转染试剂销售厂家

加入混合液，将细胞放回培养箱中培养一个小时。上海正规细胞高效转染试剂供应商

转染的注意事项：培养基中的物品物品，比如青霉素和链霉素，是影响转染的培养基添加物。这些物品一般对于真核细胞无毒，但阳离子脂质体试剂增加了细胞的通透性，使物品可以进入细胞。这降低了细胞的活性，导致转染效率低。所以，在转染培养基中不能使用物品，甚至在准备转染前进行细胞铺板时也要避免使用物品。这样，在转染前也不必润洗细胞。对于稳定转染，不要在选择性培养基中使用青霉素和链霉素，因为这些物品是GENETICIN选择性物品的竞争性克制剂。另外，为了保证无血清培养基中细胞的健康生长，使用比含血清培养基更少的物品量。大多数已建立的细胞系都是非整倍体，原代培养包括了表达不同基因组合的细胞的混合物。细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变，总染色体重组或基因调控变化等而演化，这会导致和转染相关的细胞行为的变化。如果随时间发现这种变化，融化一管新鲜的细胞可能会恢复原先的转染活性。比如，新鲜融化的NIH3T3细胞比传代8次的细胞表现出更高的转染效率，融化细胞的进一步传代并没有降低转染效率。因此，如果观察到转染效率降低，可以试着转染新鲜培养的细胞以恢复较佳结果。上海正规细胞高效转染试剂供应商