CRISPR基于sgRNA与基因组序列互补定位到靶位点，不论哪种CRISPR系统，都存在sgRNA序列不完全匹配但能够结合基因组的脱靶现象，CRISPR定位到脱靶位点引发序列改变就属于第二类风险。CRISPR技术诞生刚过10年，期间迅速取代TALEN和ZFN，成为学术界通用的基因编辑技术，也彻底改变了我们的生物学研究方法。为提高CRISPR技术的安全性，特别是往临床应用发展时的安全性问题，研究者们一直以提高靶位点的编辑效率和准确性，同时降低脱靶位点编辑发生概率为目标，来优化CRISPR技术。另一方面，研究者们也开发了大量检测方法，用于检测CRISPR的靶向风险和脱靶风险，用于早期sgRNA序列的筛选，以期望获得一个较为安全的sgRNA。基因编辑脱靶将无处隐藏。无锡off-target脱靶检测实验室

对于CAR修饰的免疫细胞，应采用多种体外方法评估其胞外抗原识别区的脱靶风险。TCR修饰免疫细胞的脱靶毒性可通过评估TCR与人体自身抗原肽的交叉识别能力来评估。首先，应采用体外试验测定TCR修饰的免疫细胞与人自身抗原肽-HLA（与递呈靶抗原肽的HLA等位基因相同）复合物的亲和力，并说明抗原肽的选择依据及选择范围。此外，还应研究其他相关或不相关的蛋白中是否含有靶抗原肽序列。如果TCR与人自身抗原肽有交叉反应可能，应确定靶抗原肽的较小识别基序（motif），并采用计算机预测分析评估交叉反应性。如果计算机预测可识别出具有潜在交叉反应性的抗原肽，应在体外测定TCR修饰免疫细胞对表达相应蛋白或递呈相应抗原肽的的细胞的识别能力。如果不能排除交叉反应性，应基于含有潜在交叉反应性抗原肽的蛋白的表达模式以及TCR与潜在交叉反应性抗原肽的亲和力来进行风险评估。为获得TCR与其他等位HLA潜在交叉反应性的信息，应进行充分的HLA交叉反应性筛选。育种脱靶检测分析针对已经获得的有切割能力的sgRNA，需要进一步明确其体内脱靶效应。

BLESS：利用生物素标签对DSBs进行原位标记，后经PCR扩增实现对于生物素标记片段的富集，并通过二代测序实现脱靶位点检测。直接检测细胞中的切割位点，灵敏度与细胞、组织密切相关。LAM-HTGTS，片段化的gDNA经过LAM-PCR引入接头，然后进行全基因组易位测序。高通量的全基因组范围检测，可准确检测DSBs引发的重排。GUIDE-Seq，将dsODN    s标签整合到DSBs位点，通过二代测序检测这些标签所在的基因组区域，从而确定脱靶突变的位置。广使用的细胞内检测方法。能检测低频脱靶突变。Digenome-Seq，片段化的gDNA与CRISPR/RNP混合孵育，进行全基因组测序检测脱靶。全基因组测序，直接检测切割位点，能检测低频脱靶突变。

基因编辑产品除了适用基因zhiliao产品的一般考虑以及整合性载体的特殊考虑外，长期随访中还应额外关注脱靶风险，量化评估脱靶活性和在靶活性之间的相关性，或利用在靶活性来预测脱靶活性的水平。在开发过程中应同时关注基因转导效率、脱靶效率、插入突变情况、目的基因在靶细胞中整合位点及表达。评估基因zhiliao产品整合进基因组的可能性，判断是否需要开展另外的遗传毒性研究，评估插入突变（插入位点、插入拷贝数等）引起的遗传毒性风险。需要关注脱靶编辑、转座子转座印迹引起的遗传毒性问题；鉴定/表征基因组整合位点。非临床研究是药物开发的重要环节之一。基因编辑治疗过程中安全性评价，即脱靶效应的检测。

细胞经基因修饰后会改变其生物学特性，同时也会带来新的安全性风险，如基因编辑脱靶风险、载体插入突变风险、载体重组风险、表达的转基因产物的风险等。在制定非临床研究计划时，除参考《细胞zhilliao产品研究与评价技术指导原则》（试行）中的对细胞zhilliao产品的一般要求外，还应具体问题具体分析，基于产品特点和目前已有的科学认知，结合拟定适应症、患者人群、给药途径和给yaofang案等方面的考虑，科学合理的设计和实施非临床研究，充分表征产品的药理学、毒理学和药代动力学特征。在进行获益风险评估时，还应重点关注由非临床向临床过渡时非临床研究的局限性和风险预测的不确定性。可以与靶基因之外的其他基因作用而非特异性阻断基因表达,即产生非靶基因的沉默效应。育种脱靶检测分析

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CRISPR/Cas9的问题：和TALEN和ZFNS技术一样，CRISPR/Cas9技术在应用时也存在一定概率的脱靶问题——Cas9核酸酶在非目标位点发生切割，引入非预期的基因突变。脱靶切割引入的突变可能会直接破坏细胞的基本功能，带来不可预控的严重后果。如何减轻脱靶效应？gRNA的GC含量：gRNA 的序列结构对CRISPR/Cas9基因编辑的靶向活性有影响。gRNA 序列中 40%–60%的 GC 含量可以增加靶向活性，因为较高的 GC 含量稳定了DNA：RNA 双链体并破坏了脱靶结合。gRNA-on-gRNA序列的位置对编辑有影响，位于四个核苷酸末端的嘌呤残基可以提高编辑效率。鸟嘌呤优先选择在gRNA的20位，胞嘧啶优先选择在16位以增加靶向编辑。无锡off-target脱靶检测实验室