在细菌细胞中，某种特定基因的数目。一般检测方法有若是测序结果，可选用censor软件检测相关拷贝数。Southernblot是一种常用的DNA定量的分子生物学方法。其原理是将待测的DNA样品固定在固相载体（硝酸纤维膜或尼龙膜）上，与标记的核酸探针进行杂交，在与探针有同源序列的固相DNA的位置上显示出杂交信号，通过检测信号的有无、强弱可以对样品定性、定量，从而计算出转入的拷贝数。Southern法准确性高、特异性强，但存在费时费力的缺点。另外，由于 Southern 法检测不经过靶片段的扩增（ PCR ），一般每个电泳通道需要 10-30 μ g 的 DNA ，在实际操作中就需要较大量的植物材料来提取 DNA ，而转基因植物的愈伤组织在无菌条件下经过筛选、重新分化后一般都比较细弱，不宜大量取样。如果外源基因在插入时发生基因重组，造成限制性酶切位点丢失， Southern 法也无法检测到。这些因素都制约了 Southern 法在 T 0 代转基因植物中检测外源基因拷贝数的应用。唯可生物开发并验证了一种基于探针的定量聚合酶链反应(qPCR)分析方法，用于慢病毒载体拷贝数(VCN)定量。南京CAR-T载体拷贝数技术

qPCR及dPCR定量检测比较分析,对于所有分析的患者样本，qPCR和dPCR提供了高度相似、重叠的CAR拷贝数结果。每个患者使用qPCR和dPCR获得的数据，对于CAR-T细胞扩增水平较低的患者样本(即UPN#008，#012和#018;比较大CAR-T细胞水平<5000拷贝的PBMCgDNA)，仍存在明显的统计学相关性(R2>0.78;P<0.05)，证实了即使在低CAR-T细胞水平下qPCR和dPCR的可比性。将dPCR与qPCR结果(qPCR设置为100%)进行个体拷贝数比较时，dPCR的平均定量结果为70+34%，即平均相对差为-30%。实际上，对于几乎所有测量样本，使用dPCR测定的拷贝数都较低。这一观察结果与dPCR(axis-cel或tisa-cel)检测方法无关。宁波CAR-T载体拷贝数方法慢病毒前病毒拷贝数会影响转导细胞中转基因的表达水平。

嵌合抗原受体（Chimericantigenreceptor，CAR）-T细胞（CAR-T）是指通过基因修饰技术，使用病毒等载体将带有特异性抗原识别结构域、铰链区、跨膜区、共刺激信号jihuo区等遗传物质转入自体或异体T细胞形成的。CAR-T回输到患者体内后，可与肿瘤细胞表面特异性抗原相结合而jihuo，通过释放穿孔素、颗粒酶等直接杀伤肿瘤细胞达到zhiliaoliu的目的。CAR-T对多种血液liu显示了较好的临床效果，对实体瘤zhiliao也表现出了较大的zhiliao潜力。目前已有多个产品经美国、欧盟、中国批准上市，适应症涉及急性B淋巴细胞白血病、B淋巴细胞瘤、多发性骨髓瘤。

CAR-T细胞输注后患者反应及毒性分析：本次收集攻击113例患者，采用qPCR和dPCR检测20例使用axis-cel和tissa-cel处理的gDNA样本的拷贝数。在接受tissa-celzhiliao的患者中，9例患者接受了DLBCLzhiliao，1例患者接受了ALLzhiliao。大多数患者为男性，zhiliao患者的中位年龄为56.5岁(范围10-71岁)，患者之前接受了2-7个zhiliao线。由于血液病或进展性疾病(PD)的高负担，大多数患者接受了淋巴清理和CAR-T细胞之间的桥接zhiliao。其中4例患者完全缓解(CR,n=2)或部分缓解(PR,n=2)，5例患者病情稳定(SD)，8例患者虽经zhiliao仍有PD。载体拷贝数安评，可咨询上海唯可生物。

对于CAR修饰的免疫细胞，应采用多种体外方法评估其胞外抗原识别区的脱靶风险。TCR修饰免疫细胞的脱靶毒性可通过评估TCR与人体自身抗原肽的交叉识别能力来评估。首先，应采用体外试验测定TCR修饰的免疫细胞与人自身抗原肽-HLA（与递呈靶抗原肽的HLA等位基因相同）复合物的亲和力，并说明抗原肽的选择依据及选择范围。此外，还应研究其他相关或不相关的蛋白中是否含有靶抗原肽序列。如果TCR与人自身抗原肽有交叉反应可能，应确定靶抗原肽的较小识别基序（motif），并采用计算机预测分析评估交叉反应性。如果计算机预测可识别出具有潜在交叉反应性的抗原肽，应在体外测定TCR修饰免疫细胞对表达相应蛋白或递呈相应抗原肽的的细胞的识别能力。如果不能排除交叉反应性，应基于含有潜在交叉反应性抗原肽的蛋白的表达模式以及TCR与潜在交叉反应性抗原肽的亲和力来进行风险评估。为获得TCR与其他等位HLA潜在交叉反应性的信息，应进行充分的HLA交叉反应性筛选。载体拷贝数就是某种质粒在单个细菌中的数量。南京细胞疗法载体拷贝数分析

怎样增加低拷贝质粒的提取效率？南京CAR-T载体拷贝数技术

质粒的不相容性通俗来说，就是一山不能容二虎。但是作为科学来说，我们需要一个严谨的定义。“利用同一复制系统的两个质粒会在复制和随后向自细胞的分配过程中彼此竞争，这样的质粒在细菌培养物中不能和平共处，这种现象称之为不相容性”。那要怎么才能在一个菌里面使用两个质粒呢？简单的方法就是使用不同复制源的且带有不同抗性基因的两个质粒。pUCori：复制起始点，pUC为高拷贝表达质粒（120-200个/细胞）。Amp：氨苄抗性，为原核抗性，用于质粒抽提时的筛选。U6promoter：U6启动子，真核启动子，启动shRNA的表达。CMV：真核启动子，启动ZsGreen1的表达。ZsGreen1：第三代绿色荧光蛋白，亮度比较高的的荧光蛋白。PGK：真核启动子，启动Puro的表达。Puro：嘌呤霉素抗性基因，真核抗性，用于质粒或病毒进入细胞后的筛选。Amp：氨苄抗性基因，原核抗性，用于质粒抽提时的筛选。WPRE：转录后调控序列，增加外源片段的表达效率。3’LTR、5LTR：逆转录病毒基因组两端各有一个长末端重复序列(5—LTR和3—LTR)，不编码蛋白质，含有启动子，增强子等调控元件。南京CAR-T载体拷贝数技术