由于设计的sgRNA会与非靶点DNA序列错配，引入非预期的基因突变，即脱靶效应(Off-targeteffects)。脱靶效应造成了研究中的许多不确定性，这无疑限制了该技术的应用。因此，研究者希望能开发有效的方法来检测脱靶效应。在目前主流的脱靶效应评估方法中，有一种方法为GUIDE-seq，其原理是利用一种短的双链寡聚核苷酸（dsODN）标记CRISPR/Cas诱导的脱靶断裂，然后对标签所在的基因组区域进行高通量测序，通过生物信息学分析从而确定脱靶位点。利用该技术可以在基因组范围内检测CRISPR脱靶效应，从而改变了以往先预测假定脱靶位点再检测的思路；与其他的评估方法相比，GUIDE-seq更精确、更灵敏。预算允许的情况下，通过全基因组测序的方法进行全基因组序列的分析和比对更精细，如基于NGS的iGUIDE方法。无锡育种脱靶检测guide-sequence

长期随访的观察时间长期随访的持续时间应确保足以观察到受试者因产品特性、暴露情况（生物分布和给药途径）等导致的风险，应不短于迟发性不良反应的预期发生时间。一般而言，针对不同类型的基因zhiliao产品建议如下：?具有基因组整合活性的载体（例如γ-逆转录病毒和慢病毒载体）和转座子元件建议观察不短于15年。?可以产生持续ganran、或有潜伏再jihuo风险的细菌或病毒载体（如单纯疱疹病毒）建议观察15年或至数据表明不再存在任何风险（ganran或再jihuo）。基因编辑产品建议观察15年或至数据表明不再存在任何风险。?腺相关病毒载体建议观察5年或至数据表明不再存在任何风险。嘉兴基因疗法脱靶检测报告定量脱靶检测，推荐唯可生物，实验实力强，专业性高，检测效率高，结果准确率高。

脱靶来自于这些技术所携带的功能基团，如碱基编辑的脱氨酶和先导编辑的逆转录酶，不依赖sgRNA结合基因组DNA的情况下产生的脱靶。为检测第二类脱靶现象，研究者需要针对每种技术设计专门的检测方法。1) R-loop seq在碱基编辑开发早期，虽然靶位点的编辑效率很高，但研究者也很快发现脱氨酶会在游离的时候随机修饰暴露的DNA单链，导致大量的脱靶位点。为降低这类脱靶现象的发生，研究者设计了R-loop seq，以dSaCas9结合DNA形成R-loop，暴露出DNA单链，为碱基编辑的脱氨酶提供一个固定的脱靶位点，然后以该位点的编辑效率反映碱基编辑脱氨酶的脱靶程度。

GUIDE-Seq脱靶评估技术的优势分析鼓润致力于基因组编辑工具脱靶的分析检测工作，为筛选、优化基因组编辑工具的保真性提供标准化的分析。我们脱靶分析具有如下优势：实用性强：能反映CRISPR在真核细胞中进行基因编辑的在靶与脱靶情况，以进行安全性和有效性评价；检测通量高：一次能检测多个样本的在靶与脱靶情况，并通过优化的标签设计，降低实际的测序reads数量；准确性高：绝大部分检测结果可被验证；灵敏度高：能够高效检测出低频脱靶位点，检测低至0.1%的脱靶突变；实验难度低：操作过程简单易行细胞适应性强。内基因编辑技术可能造成的脱靶效应,建立了一种被命名为GOTI。

gRNA的长度和错配： 17个核苷酸长度的gRNA显示出更高的基因组编辑效率。相比之下，18-20 bp的长度显示出较低的基因组编辑效率。在人类细胞中减少潜在脱靶效应的指导方针：1) 应避免在PAM的7-10 bp范围内靶序列有超过3个错配；2) 在PAM的12 bp内，应避免sgRNA 凸起以减少脱靶效应。gRNA的化学修饰：在gRNA核糖磷酸骨架中加入2?-O-甲基-3?-膦酰基乙酸酯会导致位点特异性修饰，使脱靶切割减少40-120倍，同时保持靶向性能。gRNA上游5'发夹结构的修饰可以提高Cas9和Cas12的特异性，降低脱靶效应。crispr/cas9脱靶检测，推荐唯可生物，实验实力强，专业性高，检测效率高，结果准确率高。广州育种脱靶检测分析

检测脱靶效应比较好的方法:CIRCLE-seq。无锡育种脱靶检测guide-sequence

长期表达。与其他产品相比，部分基因zhiliao产品的明显特征是可以在患者靶细胞或基因修饰细胞中持续存在并编码表达作用因子（功能性蛋白或基因表达调节元件），并通过长久或长期改变靶细胞或组织的功能来达到zhiliao效果。同时，由于基因zhiliao编码的作用因子在体内的长期暴露或表达异常，可能产生与其功能相关的长期安全性风险，如细胞生长失控和恶性liu形成、自身免疫反应或其他无法预测的迟发性不良反应。潜伏再jihuo。部分病毒类基因zhiliao产品可能存在从潜伏期被再jihuo的可能性或者引起机体中已有病毒ganran的再jihuo，存在ganran相关的迟发性不良反应的风险。无锡育种脱靶检测guide-sequence