英瀚斯生物为您整理免疫组化实验步骤

1、石蜡切片置于65℃烘箱中烘片2h，脱蜡至水，用PBS冲洗三次，每次5min。

2、切片置于EDTA缓冲液中微波修复，中火至沸后断电，间隔10min低火至沸。

3、自然冷却后PBS洗3次，每次5min。4、切片放入3%过氧化氢溶液，室温下孵育10min，以阻断内源性过氧化物酶。

5、PBS洗3次，每次5min，甩干后5%BSA封闭20min（封闭电荷）。

6、去除BSA液，每张切片加入50μl稀释的一抗覆盖组织，4℃过夜。

7、PBS洗3次，每次5min。

8、去除PBS液，每张切片加50μl-100μl相应种属的二抗，4℃孵育50min。

9、PBS洗3次，每次5min。

10、去除PBS液，每张切片加50-100μl新鲜配制DAB溶液，显微镜控制显色。

11、显色完全后，蒸馏水或自来水冲洗，苏木素复染，1%盐酸酒精分化（1s），自来水冲洗，氨水返蓝，流水冲洗。

12、切片经过梯度酒精（70-100%）10min一个梯度，脱水干燥，二甲苯透明，中性树胶封固。 免疫组化结果分析是什么？江苏组织免疫组化怎么选择

病理医师日常工作中经常说的一句话应该就是“做个免疫组化吧”；不管是临床医师，还是患者，他们问的多的问题则是“为什么要做免疫组化？”病理医师通过“特殊染色”来进行细胞的识别。这一做法的依据是特定细胞和组织中的成分不同、则化学性质不同，通过染色的方法则可以呈现不同颜色。不过，由于组织固定或储存等，会造成相应物质的活性降低甚至消失，因而限制了特殊染色方法的应用。随着免疫学研究的进展，根据抗原与相应抗体间特异性结合的性质，则有了现在免疫组化的方法：不同细胞、不同组织中抗原有一定差异，抗体与被测组织中的特定抗原结合，进而通过一定显色方法将结合的抗体显示出来。如有相应显色，则证实可能有被测抗原；无显色则可能无被测抗原。当然，这一方法中需注意相应的“例外”，如抗体的非特异性结合、非特异性显色，则容易造成“假阳性”；或者虽有相关抗原、但所用抗体与该抗原并未结合等，则容易造成“假阴性”。随着免疫组化的应用经验的增加，这些问题在常规应用中尽量得以避免，前者如各种显色方法的优化；后者如抗原修复方法的优化、新型抗体开发及选择。江苏组织免疫组化怎么选择英瀚斯生物为您详解免疫组化实验指南！

免疫组化的定量分析怎么做？

免疫组化的定量分析是通过图像分析软件对显色结果进行定量评估。免疫组化常用的方法有光密度分析和阳性细胞计数。光密度分析是通过测量显**域的光密度值，评估目标蛋白的表达水平。免疫组化阳性细胞计数是通过计数显色阳性的细胞数量，评估目标蛋白的表达水平。定量分析需要考虑多个因素，如显色强度、背景信号和切片厚度。此外，免疫组化定量分析的结果通常只能进行半定量分析，不能提供***的定量数据。

免疫组化的抗体选择

抗体是免疫组化实验成功的关键因素之一。选择合适的一抗需要考虑其特异性、灵敏度和适用性。特异性是指抗体只与目标蛋白结合，而不与其他蛋白发生交叉反应。灵敏度是指抗体能够检测低丰度的目标蛋白。适用性是指抗体适用于免疫组化实验，而不是其他实验（如Western blot）。此外，免疫组化实验中还需要考虑抗体的宿主物种、克隆性和浓度。免疫组化二抗的选择则需要考虑其与一抗的匹配性，以及是否带有显色或荧光标记。 英瀚斯生物，专业承接免疫组化等各类病理染色检测！

免疫组化的结果分析：

免疫组化实验通常需要设置阳性对照、阴性对照（或替代对照）（阳性对照是排除方法和实验系统有无问题；阴性对照与替代对照是排除有无非特异性染色）。一般情况下，阳性对照颜色的特点为：Ag定位，包浆、胞核、胞膜、间质具有结构性。且染色的强度不同（颜色深浅不一）；阴性对照的特点为：染色细胞与组织无区别，颜色具有弥散性，分布均匀。

英瀚斯生物可承接各类病理染色，包括免疫组化。

说明：免疫组化实验可以对结果进行定量分析，但要实验得到的必须是高质量的染色切片，要求背景染色浅且特异性染色较深，这样分析的结果才会比较准确。 常见的免疫组化方法有哪些？江苏组织免疫组化怎么选择

免疫组化protocol，详情请看英瀚斯生物官网。江苏组织免疫组化怎么选择

免疫组化技术应用于临床cancer良恶性的判断，英瀚斯生物为您介绍。对于反应性增生还是cancer性增生，可用免疫球蛋白(Ig)的轻链抗体检测B淋巴细胞增生的单克隆或多克隆性来区别。在滤泡反应性增生时，滤泡反应中心的细胞不表达细胞凋亡蛋白(bcl-2)，bcl-2阴性;而在滤泡性淋巴瘤中，由于90%以上cancer性滤泡细胞有bcl-2的高表达，bcl-2阳性。而增殖细胞核抗原(PCNA)，周期素(Cycling)，核抗原(Ki-67)通过对cancer细胞增生的程度作出评价，从而提示增生细胞的良恶性。江苏组织免疫组化怎么选择